动物模型,心率失常 中国实验动物信息网 2020-07-29 1063

　　出于不同的实验目的，可以在整个动物中繁殖出不同的心律不齐。或者，心律不齐可以通过离体心脏或心脏特定部位的体外灌注来再现。有几种常用的复制方法。

　　1、心房扑动和纤颤性心律失常

　　选择狗，猫和其他动物，麻醉后张开胸腔，暴露心脏，并在人工呼吸下进行实验。高频电可用于直接刺激心房壁，在每次刺激心房肌重新极化之间产生R或S波间隔。将乌头碱溶液应用到心房的外部。用电刺激将动物压在上腔静脉和下腔静脉之间；将乙酰胆碱或甲状腺素制剂注入心房结动脉。或者，在关闭胸部的情况下，使用动物阻塞呼吸道或吸入低氧气体。分离的心房组织块也可以用作实验，其中将包含窦房结的哺乳动物分离的心房组织块浸入低钾溶液中。

　　2、室性心动过速和心室纤颤性心律不齐经常使用狗，猫，兔子，大鼠和其他全心脏（开放或封闭）进行实验。常用的造型药物是乌头碱，洋地黄和肾上腺素。乌头碱通常以缓慢的静脉内注射方式给药。剂量：兔子100-150μg/ kg，大鼠30-50mμg，小鼠5mμg。您还可以使用洋地黄造型的有毒剂量。高浓度的肾上腺素（豚鼠为40μg/ kg，猫和狗为100μg/ kg）也可以用于快速静脉注射。这可能会导致动物多基因过早收缩和短期室性心动过速。此类模型可用于筛选抗心律不齐药物。它的优势在于，心律不齐会在几分钟内自发消失，从而可以重复测试同一只动物的心律不齐，可用于观察抗心律不齐药物的作用时间并用于自我管理。

　　3、房室传导阻滞和房室交界传导正常的心律不齐

　　主要选择猫狗。在胸腔张开且心脏暴露的情况下进行麻醉，将热生理学注入距离狗的根尖1.5-2 cm的左心室心肌中，并注入10-15 ml生理盐水（80-90°C）或95％酒精和25％的硫酸（向猫和兔子注射4-7毫升）会导致大型心肌局部坏死性心律失常。您还可以使用垂直于狗房室交界处的针（即左下心房，心房，下腔静脉和前房的沟）刺穿下房间隔的房室。在交叉路口上方和前方约0.5厘米处）。缓慢将2-5 ml的95％或无水酒精注入淋巴结区域，导致核组织坏死。您也可以使用豚鼠通过左心耳向左心房注射5μg腺苷。注射后大约1秒钟，出现典型的II或更高传导阻滞。在更严重的情况下，房室骤停完成。停留时间和剂量之间存在平行关系，心率和节律可以在几秒钟或10秒内恢复。尽管该模型具有良好的可重复性，但其传导阻滞持续时间短，并且不易于用于药物观察。如果注入大量腺苷，则传导阻滞的恢复不容易。除豚鼠外，腺苷一般不会引起其他动物的传导阻滞。

　　四。使用窦性心律不齐

　　公兔，将细钢丝改成直径约0.8厘米的半环，并用一小块棉布包裹。用40％甲醛渗透后，将环放在上腔静脉根和右心房的交界处1分钟。动物立即表现出心电图改变，心率减慢约50％，并在约6-8分钟时降至*低水平。它在1-2分钟内消失并形成临界心律。在3-10分钟内，发生ST段偏离（向上，向下或先向上然后向下）。在更换过程中，伴随着动脉压的降低。分钟数降到*低。这种方法是一种非常成功，持续时间*长（长达5小时），可重现且稳定的鼻窦衰竭模型，其病因和ECG表现与临床类似。