内页大图

【动物造模-药效评价】-脑缺血法建立血管性痴呆动物模型

  1.造模材料  动物:纯系健康Wistar雄性大鼠,18~20月龄,体重(500±20)g;药物:10%乌拉坦(1g/kg),硝普钠(25mg/kg);器械:无创动脉夹。

  2.造模方法  术前12h禁食水。以10%乌拉坦(1g/kg)腹腔注射麻醉后,消毒,颈正中切口,钝性分离双侧颈总动脉及神经,随即用无创动脉夹夹闭双侧CCA,10min后,再通10min,再夹闭10min,首次夹闭前给予腹腔注射硝普钠25mg/kg。再通后缝合伤口,放回笼中保温饲养,每只大鼠肌内注射青霉素20万U,连续5天,以防感染。假手术组仅分离双侧颈总动脉后缝合。

  3.造模原理  由于脑缺血导致海马受损,从而造成血管性痴呆。

  4.造模后一般变化  利用大鼠程控穿梭箱进行行为学检测发现,和假手术组电击次数(15.91±1.58)次、电击时间(73.45±6.20)s相比,造模组大鼠的电击次数(24.70±4.03)次、电击时间(105.50±10.82)s,有极显著差异。

  5.造模后生化变化  假手术组和模型组大鼠的谷胱甘肽过氧物酶(glutathione peroxi-dase, GSH-Px)活力分别为(551±0.175)酶活力单位,(288±0.099)酶活力单位,有极显著差异,提示模型组GSH-Px活力降低。

  6.造模后病理变化  海马区细胞凋亡观察:低倍镜下,HE染色后,可见模型组CA1区细胞排列松散,锥体组织缺乏,细胞模糊;凋亡细胞染色后,可见大量凋亡细胞。假手术组大鼠海马锥体细胞层结构紧密层次丰富,细胞线清晰可见;凋亡细胞染色后海马CA1区有少量凋亡细胞。

  7.注意事项  手术器械严格消毒,防止手术感染,手术创伤应尽可能小,严格无菌操作。

  术后大鼠应分开,等苏醒后3~5h才能合笼饲养,防止先醒的舔咬昏迷大鼠的伤口。饲养室内尽可能保持大鼠最适温度、湿度。

相关资讯 【动物造模-药效评价】-脑动静脉畸形动物模型 【动物造模-药效评价】-颅脑火器伤动物模型 【动物造模-药效评价】-大鼠弥漫性合并局灶性脑损伤模型 【动物造模-药效评价】-7/8肾切除大鼠慢性肾衰竭模型 【动物造模-药效评价】-应激性高血压模型