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CRISPR帮助追踪胚胎生长轨迹,或可应用于癌症中

  为了敲除斑马鱼胚胎中的基因,哈佛大学的发育生物学家Alexander Schier使用了基因组编辑系统CRISPR。然而,席尔*终淘汰了一个或多个基因。他和他的同事们设计了一种标记和跟踪发育中的动物细胞的新方法。研究结果在线发表在《科学》杂志第26期上。研究人员利用CRISPR诱导的突变揭示了一个令人惊讶的发现:成年斑马鱼的许多组织和器官仅由一小部分胚胎细胞形成。

  一些研究人员已经开始使用这种方法来研究开发过程。伦敦Kerrick研究所的发育生物学家James Brisco将该方法称为“ CRISPR技术的创新应用”。 “这项技术有助于重建构成动物身体的所有细胞的“血统”。 “一些科学家计划使用这种方法来追踪肿瘤的进展。一些人使用CRISPR来记录细胞历史,包括细胞对环境的影响。

  GESTALT的新技术:建立动物体内所有细胞的“家族图”

  Sheer和她的同事来自哈佛大学遗传学家乔治·丘奇(George Church)。我们使用了CRISPR的“基因组破坏”功能。在正常的CRISPR编辑中,一种称为引导RNA的分子可将Cas9酶准确地引导至基因组中的特定位点,在该位点切割双链DNA。模板DNA可以诱导细胞修复双链断裂,编辑准确性可以达到单碱基改变的水平。但是,如果科学家不提供模板链,则细胞将无法准确修复断裂,*终基因将形成“疤痕”,从而可能发生核苷酸丢失或插入。为了确保真正剔除

  目标斑马鱼基因,Schier引入了几种靶向该基因多个位点的不同指导RNA。但是,一些重复实验的结果却大不相同。去除的大小是不同的,遗传疤痕区域出现大小插入。华盛顿大学的遗传学家Shear和Jay Shendua意识到,这种遗传破坏的多样性可以得到进一步利用。 Schier和Shendure已将一系列外源DNA插入斑马鱼胚胎的基因组中。接下来,将对应于靶序列的Cas9酶和10个指导RNA注射到单细胞胚胎中。当胚胎发育时,每个细胞的CRISPR系统会破坏目标DNA多次,并用条形码标记(唯一删除或插入)。当细胞分裂时,子细胞首先带有相同的条形码标签,并在不同位置被Cas9切割后经历不同的变化。条形码的*次更改发生在2单元阶段。约4个小时后,编辑工具会慢慢关闭。此时,胚胎包含数千个细胞。然后遵循其余的条形码。这些细胞的持续增殖发生在成年动物中。

  四个月后,科学家收集了成年斑马鱼器官,并从大约200,000个细胞中分离出1,000多种不同的条形码。由于具有相似条形码的细胞更可能在以后的发育中分裂和形成,因此科学家可以使用计算机程序来计算这200,000个细胞的谱系。换句话说,您可以使用系统发育图找出每个细胞的来源。

  *令人惊奇的发现之一是,所有器官中的许多组织都是由少量细胞产生的。在大多数器官中,超过一半的细胞共享少于七个条形码。在除大脑以外的所有器官中,25种不同的条形码构成了90%以上的细胞。布里斯科说:“组成组织的细胞数量可能比预期的要少。”对于

  发育生物学家来说,这项称为GESTALT(用于谱系追踪的合成靶点阵列的基因组编辑)的新技术有助于了解动物是如何由单个细胞形成的。的。它还有助于阐明癌症研究中的重要问题,例如肿瘤中前体细胞的数量,肿瘤内细胞之间的关系以及癌细胞扩散与原始肿瘤之间的关系。

  Schier说,这项技术也有一些缺点。例如,并非所有新一代细胞都可以可靠地标记。但是,与跟踪细胞及其后代的其他方法(例如,依靠染色方法或自发突变)相比,使用CRSIPR生成的条形码标记进行后续分析更为有效且易于使用。我会。波士顿儿童医院干细胞项目负责人伦纳森说: “用这种方法标记细胞的方法比现有方法更容易,因此癌症生物学家将考虑使用这种方法来研究癌症。尝试一下。

  另一个mSCRIBE系统:记录细胞所经历的环境影响

  研究人员正在提出其他方法将CRISPR转变为一种细胞记忆。她说:“从概念上讲,这是*令人兴奋的事情。历史可以记录在DNA中。”麻省理工学院的研究小组已经在进行这项研究。上周,Timothy Lu和他的同事在预打印的网站bioRxiv.org上上传了一篇文章,描述了一种称为mSCRIBE(哺乳动物合成细胞记录仪集成生物学事件)的系统。研究人员没有添加包含10个CRSIPR靶向序列的条形码,而是修改了该位点,以将单个CRISPR靶向序列插入细胞并编码指导RNA。*终,系统以自身为目标。指导RNA诱导Cas9进入其源DNA,从而破坏DNA并导致序列突变,*终产生包含突变的指导RNA。突变的引导RNA进一步将Cas9引导至修饰的靶序列,并且该过程继续循环。在此期间,DNA序列和指导RNA也不断变化。通过研究CRISPR靶序列在数千个单细胞中的变化,研究人员估计Cas9需要执行几轮才能生成特定序列。 (此过程类似于交流游戏中需要的回合数。)将*个短语“龙虾煮”转换为“输队”。在下一个实验中,我们将Cas9靶基因的活性与细胞内炎症途径的活性相结合。在暴露于更多炎症因子TNFα的细胞中,在目标序列中记录了更多轮的Cas9突变。接下来,用CRISPR记录工具测试小鼠,给动物注射修饰的细胞,并向某些细胞注射促炎分子。与未治疗的小鼠相比,在注射了这些分子的小鼠中,CRIPR靶向序列发生了改变。作者写道,该方法可以应用于体内,以模拟方式记录生理相关的生物特征信号。 Lu和他的同事建议,这种方法可以在肿瘤微环境中记录癌细胞刺激物,并在疾病发展过程中追踪细胞内特定途径的活性。丘奇说,这种方法对脑研究也非常有用,例如记录基本记忆所涉及的通路的活动。 “此方法可用于将临时过程转变为永久记录,并将其呈现给大脑中的所有神经元细胞。”

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