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基底动脉栓塞动物模型怎么制备?

  (1)繁殖方法将戊巴比妥钠(35 mg/kg体重)腹膜内注射到400-450 g纯白红眼豚鼠中进行麻醉,将头放在特殊的头架上并插入气管。切开导管,自发呼吸,左颈动脉,在近端插入肝素化动脉导管,用压力传感器和前置放大器测量平均动脉压(MABP),并使用激光多普勒流量计的A/D转换然后将要由设备转换的信息输入到计算机应用软件中进行记录和分析。用腹侧入路打开右耳廓,露出耳蜗,将与舌枕相连的胸骨舌骨肌和长颅肌中央分开,露出枕骨颅底,打磨骨窗和基底动脉暴露并释放并使用滤纸切成条状,分开右颈动脉,将丝线穿过并结扎。绑扎用一个结打结,但没有拧紧。用棉签擦拭从耳蜗底部到侧壁的粘膜骨膜,用三维夹具固定激光多普勒流量计探头,然后将其平坦地切割到耳蜗底部的侧壁。 )被测量。一旦CBF和MABP稳定后,记录5分钟作为诱导栓塞之前的基线水平,拧紧绑扎带结扎右颈动脉,然后在包裹基底动脉的滤纸条上滴两滴40%FeCl3水溶液。连续记录CBF和MABP 50分钟。 CBF和MABP数据均在栓塞诱导前为100%,计算了栓塞诱导后CBF和MABP的变化率,*后对存储在计算机中的数据进行t检验配对。被处理。

  (2)通过该方法诱导后5-10分钟的模型特征,模型动物的CBF与诱导前相比开始下降,差异非常明显;由于诱导时间的延长CBF的减少逐渐增加,诱导后50分钟,CBF与预诱导之间的差异也非常重要。在整个建模过程中,将平均CBF与归纳前进行比较,差异也非常重要,但MABP没有明显变化。由于椎基底动脉和颈动脉具有相互连通的大脑动脉环(willisCircle),因此大脑动脉环用于创建基底动脉栓塞和内耳缺血的动物模型。还应考虑以后的侧支循环问题的形成。用这种方法,将一根颈动脉插管,再结扎另一根颈动脉,然后诱发基底动脉栓塞,并减少基底血供区的血流量。在先前的研究报告中建立的内耳缺血模型主要使用耳蜗动作电位,脑干听觉诱发电位和一般组织病理学变化作为观察指标,间接确定内耳微循环的变化。我用了有些人使用生物微球技术来粗略估计CBF的变化,或者使用激光多普勒技术来测量CBF,而没有考虑血压波动对CBF的影响。在这项研究中,使用激光多普勒技术直接测量了基底动脉栓塞术前后的脑血流变化。同时,测量MABP并与CBF信号同步输入到计算机。它不仅直观,而且可以准确计算CBF和MABP的变化,并观察MABF对CBF的影响。

  (3)比较医学该方法可能在豚鼠中诱发基底动脉栓塞,对于研究临床动脉栓塞在内耳微循环中的机制以及抗栓剂的开发和应用是理想的。提供了逼真的实验动物模型。由于动脉栓塞引起的内耳微循环障碍的数量不断增加,因此有必要建立内耳动脉栓塞的动物模型。但是,建立这种动物模型的方法仍然是一个需要改进的问题。在该模型创建方法中,在栓塞前选择靠近小脑前下动脉的基底动脉,从而确保向内耳的血液供应,而不管内耳动脉是直接来自基底动脉还是小脑前下动脉。可以减少。当前,有许多用于诱导血栓形成的方法,包括光化学方法,电流刺激方法和化学试剂诱导方法。然而,该模型采用的制造方法成本低,易于操作,栓塞位置准确,并且栓塞动脉的病理变化与人类相似。用这种方法诱发基底动脉栓塞所需的时间是足够的,当在动物模型中研究抗血栓形成剂时,可以有效记录脑血流的变化。总之,使用这种方法诱导基底动脉栓塞可导致内耳CBF降低,这为研究内耳微循环障碍和抗血栓药物研究提供了理想的动物模型。它是阻塞性疾病的治疗具有重要意义。

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