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怎么制备复合因素诱发肝衰竭动物模型?

  (1)复制方法成年雄性小鼠或大鼠禁食后12小时,腹膜内注射D-半乳糖胺(D-Gal)和内毒素脂多糖(LPS)0.1、剂量为800-1000 mg/kg体重mg/kg体重..或成年大鼠,将30毫克/千克体重的内毒素同工型FS-112(溶于5%乙二醇,5%乙醇,5%葡萄糖中)注入尾静脉,并在2天后进行70%的部分肝切除术。它是。或成年犬,静脉注射30%对乙酰氨基酚(APAP)180 mg/kg体重,皮下注射40%CCl4、通过相同途径重复给药9小时,剂量为初始剂量的一半。在给药和/或手术后,连续观察模型动物的总体状况和存活,并定期收集血液以制备血清用于生化测试以及肝和肾功能。在模型动物死亡或人工处死后,检查器官和组织(例如肝,心脏,肺和肾脏)的病理。

  (2)模型的功能腹膜内注射D-Gal和LPS 3小时后,模型动物的肝组织开始浮肿。 6小时后,水肿变得明显,肝脏表面充血,部分肝脏减少,肝囊变紧,肝细胞增加。血浆浓度。细胞核收缩,染色质位于核膜之下,线粒体肿胀,细胞内和细胞膜的结构明显被破坏。 12小时后,肝组织严重坏死,坏死面积明显增加,小叶结构被破坏,腱索解离,肝窦内肝细胞溶解,扩张和充血,间质小出血,坏死和门静脉区域的炎性细胞浸润;此时血清ALT,TBIL,TNF-α,ET-1、IL-6、NO水平升高。 ALB含量降低并且模型小鼠死亡8-21小时。在具有FS-112和部分肝切除模型的动物中,ALT和TB的水平从术后12小时到72小时逐渐增加。第二次注射APAP + CCl4后,模型犬无法站立,但仍然能够喝水并摇头。血清ALT,AST,TBIL和NH3水平在12小时,24小时和43.5小时逐渐升高,而ALB水平逐渐降低,PT随时间延长,在30小时后逐渐变得嗜睡成为了。肝昏迷的平均出现时间为40.5小时。在此期间,肝脏的气味非常明显,尿液呈深黄色或棕黄色。动物在41.5小时死亡,平均死亡时间为43.5 h。 (3)急性肝衰竭的理想动物模型需要六个基本条件。精疲力尽。 ②可逆的:对有效的治疗作出反应,促进疾病朝着积极的方向发展并生存。

  (3)可评估的:从复制到死亡的模型需要有足够长的病变时间,以便能够可靠地进行治疗并评估治疗效果。 ④可复制:在不同时间和位置复制的模型具有基本相同的生理,生化和病理指标,以及死亡时间,并且具有可比性。 ⑤实用:可以根据实验需要使用不同大小的动物进行建模。 ⑥安全性:实验程序和真菌诱导剂应安全且毒性低。满足上述条件的主要动物模型有两种:药物肝损伤模型和手术模型。前者的造模剂(肝脏毒素)主要包括CCl4、半乳糖胺,对乙酰氨基酚,硫代乙酰胺,脂多糖,后者包括急性肝缺血,全肝和部分肝切除术。 ..但是,由于不同模型产生的机制,上述方法的复制模型(单因素)具有其自身的特征和不完善之处。例如,全肝切除模型的过程是不可逆的,部分肝切除模型的操作和工作量太大,CCl4模型中的肝昏迷的症状尚不清楚,扑热息痛模型的肝外毒性太大。 ,巯基乙酰胺模型毒性太大。该模型对象主要限于小动物,半乳糖胺模型是药物引起的肝衰竭的理想动物模型,但昂贵的药物限制了其应用。在这方面,基于以上六个模型建立的基本条件,一些学者使用不同的药物组合或药物和手术组合来创建肝衰竭模型。该模型同时使用D-Gal输注和LPS输注,或在部分肝切除术之前同时使用S-112输注,从而将LPS直接导向D-Gal或肝切除术引起的内源性内毒素血症。可以注射。产生的外源性内毒素血症具有协同作用,增加了对肝细胞的毒性。与仅进行D-Gal注射或手术切除相比,建模所需的药物量大大减少,肝脏切除率也大大降低,从而显着延长了动物的存活率和成形率,会有所改善。类似地,APAP和CCl4的联合给药被用于创建一个模型,其中叠加了两种肝毒性药物对肝细胞的损害。与单独使用的两种药物相比,该模型所需的剂量显着降低,肝外毒性显着降低。考虑到这一点,使用复杂因子进行建模的方法已被广泛接受,并已成为建模肝衰竭*广泛使用的方法之一。

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