心律失常可在整个动物中繁殖,或通过离体灌注离体心脏或心脏的特定部位进行体外灌注,具体取决于各种实验目的。*常用的复制方法是:
1.选择狗,猫和其他动物进行房扑和房颤性心律失常。麻醉后,打开胸腔,暴露心脏,并在人工呼吸下进行实验。高频电可用于直接刺激心房壁,因此,当心房肌重新极化时,每个刺激都是R波或S波间隔。将乌头碱溶液施加到心房的外部,在此期间挤压动物。电刺激期间上下腔静脉;将乙酰胆碱或甲状腺素制剂注入窦房结动脉。或者,在关闭胸部的情况下,使用动物阻塞呼吸道或吸入低氧气体。分离的心房组织块也可用于实验,将哺乳动物的分离的心房组织块(包括窦房结)浸入低钾溶液中。
2.室速和室颤性心律失常主要在狗,猫,兔子,大鼠等的整个心脏(开胸或封闭)中进行。常用的造型药物是乌头碱,洋地黄和肾上腺素。通常,乌头碱缓慢地静脉内注射。剂量:兔子100-150μg/ kg,大鼠30-50 mg/kg,小鼠5 mg/kg。您还可以使用有毒的洋地黄造型。高浓度的肾上腺素(豚鼠为40μg/ kg,猫和狗为100μg/ kg)也可以用于快速静脉注射,这可能导致动物多发性心脏收缩和短期心室性心动过速。这样的模型可以用于筛选抗心律不齐药物。优点是心律不齐在几分钟之内自发消失,可以重复测试同一只动物的心律不齐。这对于观察抗心律不齐药物作用的持续时间和自我控制很有用。
3.房室传导阻滞和房室交界处的传导性心律失常主要是狗和猫。当心脏在麻醉下暴露时,将其注射到距狗的心尖1.5-2 cm的左心室心肌中。生理盐水(80-90°C)或95%的酒精,10-15 ml的25%硫酸(向猫和兔子注入4-7 ml的硫酸)会导致大心肌局部坏死性心律失常。也有可能在狗的房室交界处(即,在左下心房,心房和下腔静脉的交点上方约0.5 cm处)用针刺穿房间隔下方的房室。向结节区域缓慢注入2-5 ml的95%或无水酒精,导致核组织坏死。豚鼠也可用于从左心耳向左心房注射5μg腺苷。注射后约1秒,出现典型的Ⅱ度或更高的传导阻滞。在更严重的情况下,房室骤停是完整的。中风时间和剂量之间存在平行关系,心率和心律可以在几秒钟或10秒内恢复。尽管该模型是可重现的,但它的传导阻滞持续时间短,并且不易于用于药物观察。注射大量腺苷并不容易恢复传导阻滞。除豚鼠外,腺苷通常不会引起其他动物的传导阻滞。
4.在患有窦房结性心律不齐的雄性兔子中,一根细钢丝形成直径约0.8厘米的半环,并用少许棉布包裹。渗入40%甲醛后,将环放在上腔静脉根和右心房的交界处1分钟。这些动物的心电图显示快速变化,其心率下降了约50%。然后在大约6-8分钟内降至*低水平; P波几乎在那里,在1至2分钟内消失,形成临界心律; ST段偏离(上升,下降或先升后降)发生在3-10分钟内;伴随着心电图改变时的动脉压降低。分钟数已降至*低水平。该方法的窦房结综合征成功率高,持续时间长(长达5小时),可重复性高,模型稳定,病因和心电图表现相似。