实验动物给药 中国实验动物信息网 2020-10-13 529

　　（1）皮下注射

　　注射时，用左手拇指和食指提起皮肤，并用5（1/2）号针头刺入皮肤下面的注射器。皮下注射部位用于大腿后部或小腹内部的豚鼠，小腹中的大鼠以及背部或腹股沟的兔子。

　　（2）皮内注射

　　对于皮内注射，有必要去除注射部位的皮毛。消毒后，用左手拇指和食指压紧皮肤。在手指之间使用结核病。具有四（1/2）根细针的灌注注射器粘附在皮肤表面并穿透，然后提起并刺穿一点以注入液体。此时，可以在皮肤表面看到小的白色凸起。

　　（3）肌注

　　肌注必须是肌肉发达且大血管不能通过的部分。通常，选择腰部。注射可使肌肉快速垂直刺入，如果血液不回流，则可注射针头。对于小动物（例如小鼠和大鼠）的肌肉内注射，请用左手抓住小鼠的耳朵和头部的皮肤，用右手的5（1/2）针头的注射器将针头放在大腿外侧肌肉中。刺注射药液。

　　（4）腹膜内注射

　　在试验大型和小型白色小鼠时，用左手握住动物并将腹部指向上方，然后用右手将注射针插入皮肤下的左（或右）小腹。 ，将针头向前推0.5-1.0厘米，以450度角通过腹部肌肉，固定针头，然后缓慢注入药液。为防止损坏内部器官，请将动物的头部向下放置，然后将内部器官移至腹部。如果实验动物是兔子，则针插入部位距离小腹中的白线1厘米。

　　（5）静脉注射

　　1、兔耳中的血管清晰分布。兔子耳朵的中心是动脉，耳朵的外边缘是静脉。内静脉较深且难以固定，因此不使用。外静脉很浅，易于固定，经常使用。首先在注射部位拉出外套，用手指轻拂或摩擦兔子的耳朵以填充静脉，将静脉的近端捏在左手的食指和中指之间，用拇指，无名指收紧静脉的远端用右手包住手指和小手指用6号针头握住注射器，从静脉的远端尽可能刺穿，移动针的拇指以固定针，松开食指和中指，然后注入液体然后拉出针并按住针眼一会儿。

　　2、小鼠和大鼠通常使用尾静脉注射。有三个尾静脉，一个在左，右和后侧。左右尾静脉很容易固定。您可以在背面使用一个，但固定位置并不容易。在手术过程中，将动物固定在大鼠的桶上或用烧杯拧紧以露出尾巴。将尾巴在45-50°C的温水中浸泡30分钟，或用乙醇擦拭以扩张血管并软化表皮上的表皮。用食指捏住大鼠尾巴的两侧以填充静脉，用中指从下方提起尾巴，用无名指和小指夹住尾巴的末端，用右手握住注射器，4（1/2） ）连接细针，使针与静脉平行（小于300），并从皮肤稀薄且易于穿透的尾巴下方1/4（距尾巴尖端2至3 cm）插入针头。首先，缓慢注入少量药物溶液。如果没有阻力，针可以进入静脉并继续。注射。注射后，将尾巴弯曲到注射侧以止血。如果需要重复注射，请尽可能开始，然后将注射移向尾巴的底部。

　　（6）口服给药

　　在急性研究中，口服给药主要用于强制喂养。该方法是准确的剂量，适用于小鼠，大鼠，兔子和其他动物。对于小鼠，大鼠（或几内亚猪），请使用输血针或细腰针来平整斜角的尖端，并在针尖周围焊接一个圆头。注意不要堵塞针孔。这是一个强制繁殖针。用圆头硬玻璃毛细管或特殊的塑料毛细管发射导管。对于强制进料，推注射器的针头以吸入药液。用左手将动物的皮肤放在鼠标的后颈和脖子上，用右手握住注射器，将强行喂食的针头插入动物的嘴中，然后将食道沿咽后壁缓慢插入。动物应固定在垂直位置，插入针头时不应有阻力。如果您感到阻力或动物受苦，则应立即停止或拉动针头，以免食道损坏或刺穿，以及意外侵入气管。通常，可以在小鼠中插入3-4cm的强行口服针头，在大鼠和豚鼠中插入4-6cm的强力口服针头后再注射。常用的强制剂量是：小鼠0.2-1 ml，大鼠1-4 ml，豚鼠1-5 ml。

　　（7）其他管理方法

　　1、用于粉尘，气体或雾气形式的用于呼吸道管理的药物或有毒气体应通过动物的呼吸道进行管理。例如，在一般实验中，用乙醚吸入动物的麻醉剂，吸入一定量的氨，二氧化碳等，以观察呼吸和循环的变化，规律量的二氧化硫，刨花烟雾等。吸入会引起动物模型，例如慢性支气管炎。它被更广泛地使用，尤其是在毒理学实验中。

　　2、皮肤给药需要透皮给药以鉴定药物或毒素通过皮肤的吸收，局部作用，致敏性和光敏性。例如，兔子和豚鼠经常使用皮肤背面的特定区域来去除头发，并向皮肤上涂抹特定的液体，该液体通常会被皮肤吸收。

　　3、该方法主要用于脊髓麻醉或脑脊液提取。

　　家用椎管注射：将兔子放在自然位置，弯曲尾巴，用粗剪刀剪掉第7腰椎周围的后毛，用3％碘着色剂消毒，干燥后使用，用79％乙醇擦去碘。触摸兔子后椎骨连接线的中点正下方的第七腰椎间隙（在第七腰椎和1骨*椎骨之间），然后插入腰穿针。当针头到达椎管（蛛网膜下腔）时，您会看到兔子的后肢跳动。这表明穿刺针已进入椎管。此时请勿刺穿，以免损坏脊髓。固定针头后，注射药物。

　　四。大脑Sisterna Magna在动物麻醉下给药。

　　五。脑内给药该方法常用于微量化学的动物实验。将病原体接种到动物的大脑中进行检查，并观察接种后的各种变化。向老鼠的大脑投药时，请选择一根5（1/2）针，针尖的塑料管的末端要有2毫米深，从老鼠额头的中心穿刺大脑，然后涂抹药物或接种物。注入。对豚鼠，兔子等进行脑内注射时，有必要使用颅内钢针刺入颅骨，然后使用注射针刺入大脑，然后缓慢注射测试对象。有。应减慢输注速度，以免颅内压急剧上升。

　　6、这种给药方法通常用于麻醉动物。对于兔子的直肠内给药，请使用用于水肿的橡皮管或使用第14导尿管。将凡士林涂在橡胶管或导管头上，助手蹲在桌子上，用左臂和左胁腹轻轻按压兔子的头和前脚，用左手握住兔子的尾巴以露出肛门和右手。使用轻轻握住后肢，实验者将橡皮管插入兔子的肛门，深度为7-9厘米。对于雌性动物，请注意不要将其意外插入阴道（肛门靠近尾巴的底部）。插入橡皮管后，牢固插入注射器和橡皮管以注入药液。

　　7。这种关节内给药的方法通常用于复制关节炎的动物模型。用家兔时，将家兔的卧位固定在家兔固定台上，切下关节外皮，用碘或乙醇消毒，然后从下方和两侧用手固定关节，并将皮肤稍微放在一侧。我将移动它。将针插入韧带连接点上方约0.5厘米处。从上前部到下后部斜向插入针头，直到针头的阻力减小，然后缩回针头并将其垂直推入关节腔。当针头进入关节腔时，通常感觉像是膜上的孔，表明针头可以进入膝关节腔并注入药液。