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如何提高动物实验稳定性的方法?

如何提高动物实验稳定性的方法?

  大家在做动物实验的时候,常常会出现模型不稳定,结果混乱,或者数据个体差异过大的问题,我根据我做过的一些实验试着总结一些经验,比较适合刚接触动物实验的战友们,对于动物实验的高手们,还请多多指教,并希望能跟帖也说说自己的经验

  多数战友有的是做毕业课题时需要做动物实验,有的是以动物实验为业。以毕业课题为主的同学很多没有接触过动物实验,基础也相对薄弱,对于这部分同学可以先找找以前的帖子,看看别人的讨论,多看看文献,理清思路,但是我们也会发现文献中很多没有细节,别人的经验也不一定全部适合自己,所以只有多做预实验,多思考才能更好的完成一项动物实验,我从以下几个方面谈谈我的看法:

  1.动物性别、体重选择:

  *常用的是大小鼠,兔子这些,犬和猴在一些评价机构会经常用到。大小鼠已经取消了普通级,只有清洁级及更高级别。对于动物选择的性别,*好以雌雄各半为好,因为雌性小鼠受自身激素影响,有可能会得到不一样的结果。国外不是很承认昆明小鼠,所以想发外文的*好不要使用昆明鼠。因昆明小鼠为杂交系,免疫力相对强大,所以做免疫低下类似的模型时应避免选择昆明鼠,以bablc较好,在用药物造模的模型中,有时候昆明鼠所用的剂量也要高于其他鼠。热板实验应选雄鼠,促排卵应选雌鼠等等,大家多看看文献基本不会错;大鼠常用SD及Wistar,两者相差并不是很大。

  小鼠的体重以18-22g为好,小鼠体重太大,往往结果不是很好,差异比较大,特别是急性毒性试验,体重不可太大,体重波动范围也不可太大,这个指导原则有写的。对于裸鼠的有些试验,如果实验周期比较长,*好选择3、4w的鼠,因为裸鼠后期很容易因衰老而死,这个有过比较惨痛的教训。大鼠以180-220g为常规选择,不论大鼠小鼠,我个人建议不要给太多的粮食,长的太胖,虽然一般都是要求的自由饮食,原因一个是比较浪费(很多都被磨牙损耗了),一个是增加给药量(灌胃体积需根据给药量调整,下面会说),另外一个,根据经验,有些试验数据不是很好。以上说的都是比较常规的只是,当然有些特殊的实验选择的鼠种及体重因试验而已,比如毛发生长的实验,国内外选择比较多的是C57、C3H这种,而毛发是有生长周期的,你就要去查动物的毛发生长周期,比如C3H在7-8周的时候毛发在休止期,比较合适进行药物研究,比如如果研究性功能方面的,小鼠在8w才真正的性成熟,所以要选择8w左右的鼠,当然,具体问题要具体分析,这里只是说,鼠种、重量的选择是成功的*步。

  2.给药剂量、给药体积、给药方式、给药时间:

  阳性药的给药剂量一般是根据人的换算而来,或者直接参考的文献,关于给药剂量论坛讨论很多了,但是FDA有个指导原则已经把人与小鼠的换算系数改为12.3了,而且国内有的书上以人的体重70kg为准,有的以60kg为准,个人觉得60kg较为合理。幼鼠的剂量换算和成年鼠不同,不能按照一样的换算方式。如果是全新的药物,应该做个毒理,根据急性毒性的结果来设计三个梯度进行实验,一般是以2或3倍的梯度进行设计。有的同学没有做毒理,只做了细胞,细胞的剂量是不能够推算至动物身上的,如果真的没有足够的精力和药物做毒理,可以去找结构类似的化合物的给药剂量作为参考,西药的剂量与中药的剂量不是一个数量级的,如果你设计动物的给药剂量太大,就会被人质疑成药性的问题及研究意义的问题,比如有的新化合物推算到人体身上后,每天要吃几公斤,显然这样的研究是没有意义的,就算动物身上有效果也会被质疑。有的中药提取物设计的剂量又太小,比阳性药(化药)的剂量还小,那么显然很难做出了结果。有的虽然剂量合理,但是和同类型的阳性药相比,剂量又过大,那么别人就会质疑你化合物的优势在哪里(一般情况下,剂量越大,毒副作用越大),如果药效不能明显好于阳性药,那么你的化合物劣势就很明显了。顺便说下阳性药吧,阳性药要和你研究的药物有可比性,比如如果你的是中药提取物,那么肯定要设计一个中药上市的对照药,而且应该选结构相近,作用途径相似的,以增加可比性。

  给药剂量确定后要算给药体积,给药体积不可太大或太小,比如尾静脉注射注射0.05mL,就有点小了,如果不经意露出一些、残留一些,剂量就很不准,再比如大鼠灌胃,每天灌胃10mL,就太大了,容易灌胃后流出来,如果分上下午灌胃两次,又不符合伦理的,所以还是要算出*佳的给药体积,增加药物浓度。

  关于给药方式,*好和临床给药方式接近,如果实在没办法进行尾静脉注射,可以选择腹腔注射代替。另外混悬液是不能进行腹腔注射的,混悬液在灌胃的时候也要每灌几只摇匀一下,但是*好还是能配成溶液,比如加入CMC-Na,DMSO,超声、加热等,如果是油溶液可以溶解,那么对照组就要选择灌胃油溶液,如果受试药物有的是用油溶解的,用的是生理盐水,那么对照组可选择只用油溶液,长期灌胃给予油溶液会对生化指标造成影响,所以对照组是一定要设置的,有时候给油溶液的动物血清都是白色的,说明影响还是很大的。不论灌胃、腹腔、静脉给药,练好技术都是*基本的,灌胃灌的不好,容易造成动物死亡,或者食道受伤,那么以后再灌胃就很困难了,如果腹腔注射的不好,打到肝脏或者膀胱里,药物的效果就不能正常发挥,这些技术也有很多战友讨论过,就不再累赘。另外,正常对照组一定也要给药,比如有的对照组是给生理盐水,为了省事就每次都不给生理盐水,结果取材时候发现,对照组体重要重很多,你无法判断模型组体重的下降是因为灌胃导致的还是药物导致的,从而衍生很多无法解释的问题,所以还是要规范操作,统一操作。

  给药时间:*好每天固定,激素类药物的评价要去结合动物的激素释放规律,降血糖、血压类药物更是要选择合适的时间给药。在给药时间里面有着比较重要的一次给药,就是末次给药,下面就重点讲讲这个。

  3.随机分组、末次给药、平行试验

  首先说随机分组,多数试验是以体重随机分组,但有些也已生化指标分组,比如血糖、血压,那么就要先测一遍指标,再分组,白鼠可以用***涂抹,黑鼠可以减耳、耳标等方法,推荐用耳标,不容易出错(但做耳部试验就不可用耳标,比如二甲苯致耳肿胀实验这种)。如果是先造模的,要根据模型情况分组,比如糖尿病的实验,如果是手术造模,没有具体指标,可以做个评分,以评分分组。末次给药对于降血压、降血糖这类型的实验非常重要,而对于长期给药,辅助治疗的,中药类的不是很重要,以降血压为例,你做的这个药物的*佳降压时间是多少,如果是5h,而你给药后1h就测血压了,显然是不合理的,就算是长期给药,*后一次给药也非常重要,这里又牵扯到平行试验的问题,这个我认为是很多实验成败的关键,一定要列出一个时间点,不让实验者知道组别,用流水号操作,避免心理作用的影响,取材的人也要固定,取心脏的只取心脏,取肺脏的只取肺脏等等。平行试验会让实验数据的质量大大提高,在降血压、降尿酸、降血糖类似的实验中尤为重要,有空再详细说说,也希望有经验的战友提出自己的看法。

  以上是比较基本的做动物实验的流程,某种程度上可以提高模型及数据的稳定,后面还有取材、测指标、处理数据等,有时间再分享出来和大家讨论。文中多为自己个人看法,有不当之处还请专业人士指出,一起讨论,共同进步。

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