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创伤性关节软骨损伤修复动物模型怎么制备?

  (1)复制方法用体重为50 mg/kg的腹膜内氯胺酮麻醉4至5个月大的新西兰兔,并固定在手术板上。将定期切开的手术区域切入动物的pat骨中,以暴露股骨远端。终止the骨表面的关节软骨后,使用手钻在关节软骨表面上形成直径4-6 mm的全厚度软骨缺损。缺陷部位的一侧填充有测试物质作为实验组,另一侧填充有胶原蛋白凝胶作为对照组。手术后,将实验兔常规地饲养在兔笼中,并使其自由移动。手术后,观察动物的膝关节是否有挛缩,粘连和新微生物,以及模型动物的关节疼痛,僵硬和功能障碍。手术后1至24周处死模型动物,并取样以进行组织病理学观察。标本为常规病理切片,用甲苯胺蓝和HE染色,并置于光学显微镜下进行组织学观察。观察动物的膝关节是否有挛缩,粘连,关节软骨缓慢进行性退化,滑膜水肿,充血和颜色。

  (2)模型特征近年来,该模型主要用于生物医学开发的新领域。组织工程修复关节软骨缺损,这是准备新组织以替换缺损组织的科学。关节软骨是其组织中的代谢活性低的透明软骨。由创伤或手术引起的软骨损伤或缺陷很难修复或用纤维软骨或纤维组织替代。组织工程技术在修复关节软骨缺损中的应用具有重大影响。以这种方式建立的创伤性关节软骨损伤的动物模型可用于观察组织工程修复对动物关节软骨细胞的影响。

  (3)在比较医学中,人和动物软骨在关节所有区域的厚度都有差异,人内侧media的透明软骨层的厚度是成年兔子的5至8倍。众所周知,它是双重的。人和兔关节软骨中软骨细胞的大小没有显着差异,但是人radial骨层中单个软骨细胞基质的数量是兔软骨细胞的7-8倍。人股骨前关节软骨中的蛋白聚糖含量高于后软骨细胞中的蛋白聚糖含量。关节软骨和兔子的情况与人类完全相反,但软骨力学性能的差异导致软骨损伤后软骨修复的差异;结构和力学性能的内在差异也评价了研究结果。结果难以应用于人类,或难以重复实验结果,或者将相同的实验因素应用于不同的动物模型将得出不同的结果..因此,只有全面了解人和动物关节软骨的生物学和结构特征,才能复制出更理想的实验模型。

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