动物模型,体外循环 中国实验动物信息网 2020-08-06 1087

　　1开胸手术（无开胸手术）

　　（1）复制方法大鼠腹腔注射戊巴比妥钠，剂量为30 mg/kg体重，从口中插管并机械通气（频率60次）。/min，空气）峰值压力9.0 cmH2O（0.88 kPa），左股动脉插管，肝素化（500 U/kg体重），监测动脉压和动脉血气，将20G套管针插入尾动脉（颈动脉或股动脉）也可以插入骨头）（动脉）用作CPB灌注端。将一条14-16G套管针的前端切有几个侧孔，将其作为静脉引流管穿过右颈静脉插入右心房下腔静脉的交界处，下腔和上腔引人注目。并被虹吸排出，冠状窦血进入位于大鼠心脏平面下方30-40 cm处的储库。 CPB回路由储血器，恒温器，恒定流量蠕动泵，大鼠微膜充氧器和连接管道组成。血液储存器和充氧器之间有一个旁通通道，可将空气排出CPB前方。 CPB预先装满血液，预装溶液由12毫升林格氏乳酸，7毫升6％羟乙基淀粉，1毫升甘露醇组成。循环开始后，通过静脉引流管将静脉血引入储血罐，并通过恒温器改变温度。充氧后，将充氧器通过血泵注入动脉。旁路开始时的灌注流速约为35 ml /（kg·min），并逐渐增加到90-100 ml /（kg·min）。旁路开始后，呼吸机停止以支持呼吸，充氧器供应氧气（FiO2 100％），氧气流量与灌注的比率保持在0.8-1.0，平行体外循环。成立。在旁路过程中，动脉压维持在55-60 mmHg（7.32-7.98 kPa）。开始转移后，请使用温水箱保持温暖。当分流稳定后，直肠温度逐渐降至约32.0°C，分流后45至60分钟逐渐恢复温度。当直肠温度达到约37.0°C时，CPB停止。当机械通风重新开始并且自发呼吸稳定时，呼吸机将排空。 （2）模型的特征尽管有许多关于体外循环的动物模型方法的研究，但是迄今为止，已经使用了大型动物，例如狗，猪和绵羊，这是昂贵的并且难以管理。目前，许多学者已经以该方法为参考，以大鼠为实验对象，取得了一些进展，但是这些方法各不相同，各有特点。例如，动脉灌注可以是尾巴，股骨或颈动脉。闭胸法对动物的伤害较小，适合手术后的长期存活。使用气管插管代替气管切开术还可以减少术后并发症。

　　（3）比较医学心肺旁路手术中的心肺脑损伤主要是由于全身性炎症和心肺旁路手术中血液与非生理管接触引起的缺血再灌注损伤所致。减轻缺血-再灌注损伤和炎症反应是在手术期间提供保护的主要手段。为了研究手术后一段时间内人体的病理生理反应，必须以动物的长期存活为主要条件，因此可以采用胸腔闭合法。

　　2 Bymethodsoft开胸手术（Bymethodsoft开胸手术）

　　（1）复制方法将1000μg/ kg体重的肝素盐水注入股静脉，切开颈部和胸部的皮肤，释放器官并在呼吸机中插管。 ..打开胸部，松开右颈总动脉和上腔静脉，放置双结扎线，插入22规和20规穿刺针，然后敲击动静脉体外循环管（上腔静脉）。穿刺针进入右心房，首先插入动脉管，用凝胶预先填充，用绑扎固定，然后结扎血管的远端。通过恒温循环器将管道温度保持在38°C。释放主动脉和肺动脉并设置第10行阻塞。取一只供体小鼠，用肝素麻醉，然后将气管导管连接到呼吸机上（与上面相同）。打开胸腔后，切开右颈总动脉以止血，并加入少量胶体作为预填充溶液。心脏和肺部被完全切除，心脏的顶点被切开。人肺动脉通过右心室流出道插管，没有。用10根导线固定（切掉左心室壁的一部分，并结扎右心室壁和心室隔膜，以便于拧紧），切开左心耳以促进肺静脉回流并将管子放入体内循环静脉管道固定在实验框架中，与恒温器循环器相连的血液储存器位于其下方，肺静脉血液由旁路泵收集并通过动脉管道发送至实验小鼠的右颈总动脉。此时的循环路径是实验小鼠的右心房→静脉穿刺针，管和旁路泵→隔离的肺动脉→隔离的肺循环→隔离的肺静脉和左心耳→恒温血液储存→旁路泵和管道→动脉穿刺针。 -\→实验小鼠右颈总动脉-\→实验小鼠循环。 （2）尽管开胸手术模型的特征与临床情况更为匹配，但由于动物术后生存困难，因此通常不将动物用于术后身体反应研究。该方法通过使用孤立的大鼠肺作为体外循环充氧器引入了体外循环模型的建立，并克服了为小型动物创建机械充氧器的困难。但是，充氧器也可以是机械充氧器。 （3）在医学上更理想的大鼠体外循环模型应该是一种尽可能接近现代临床实践的实验装置。需要以下功能：在室温或低温下全流通循环支持（150至180ml /（kg·min））； 1?2小时连续旁路，保持适当的血液稀释并破坏血细胞。预充电不会超过成年大鼠的自体血容量；降温和变温可以进行足够有效的热交换以达到心脏；实验动物可以获得稳定的长期存活我会。这需要进一步调查。在实际研究中，可以根据研究目的使用不同的大鼠模型。